Immunhistokemi

Det immunhistokemiske stof ( IHC ) er en metode til lokalisering af proteiner i cellerne i et vævsafsnit til påvisning af antigener ved hjælp af antistoffer .

Immunhistokemi udnytter det faktum, at et antistof specifikt binder til antigener i biologisk væv. Antistofferne kan være af polyklonal eller monoklonal oprindelse , idet de monoklonale antistoffer er mere specifikke i det væsentlige.

Immunhistokemi tager sit navn fra roden "immuno" med henvisning til det antistof, der er anvendt i proceduren, fra ordet "  kemi  " og fra ordet "  histologi  ", der henviser til undersøgelsen af ​​biologiske væv (sammenlign med immuncytokemi). ).

Et antistof-antigen-par kan visualiseres på flere måder. I de fleste tilfælde er antistoffet konjugeret til et enzym (f.eks. Peroxidase ), som kan katalysere en farveproduktionsreaktion ( f.eks. Immunoperoxidasefarvning). Antistofferne kan også mærkes med fluorokrom (fx: FITC , Rhodamine , Texas Red eller Alexa Fluor): se immunfluorescens .

Anvendes til diagnose af kræft

Immunhistokemi anvendes i vid udstrækning til diagnose og / eller overvågning af kræft ved påvisning af unormale celler, såsom dem, der findes i kræft tumorer.

Specifikke markører er således kendt i dag for forskellige kræftformer:

Disse molekylære markører er karakteristiske for visse cellulære begivenheder såsom celleproliferation eller død (apoptose).

IHC bruges også i vid udstrækning i grundlæggende forskning til at forstå distributionen og lokaliseringen af ​​biomarkører og proteiner, der udtrykkes differentielt i forskellige dele af biologisk væv.

Metodedetalje

Stoffet placeres på en solid støtte. Antistoffet sættes til vævspræparatet og binder specifikt det protein, der skal detekteres på det væv. Tilsætningen af ​​et primært antistof bundet til et påvisningssystem (enzym bundet til antistoffet, hvis tilstedeværelse af hvilket af substratet forårsager en farvet (peroxidase) eller fluorescerende (Rhodamin) reaktion), der forårsager et signal synligt for det blotte øje eller ved mikroskopi og spektrofotometriske teknikker ja

Der er hovedsageligt to metoder til immunhistokemi og påvisning af antigener i biologisk væv:

Den "direkte metode" er en et-trins farvningsmetode . Det bruger et mærket antistof (dvs. antiserum konjugeret med FITC ), som reagerer direkte med de antigener, der findes i vævsafsnittene. Da der kun anvendes et antistof, er proceduren kort og hurtig. Det mangler imidlertid følsomhed på grund af lav signalforstærkning og er sjældent blevet brugt siden introduktionen af ​​den indirekte metode.

Den "indirekte metode" anvender et umærket primært antistof (første lag), der reagerer med antigener i vævet, et mærket sekundært antistof (andet lag), som reagerer med det primære antistof. Det sekundære antistof bør være rettet mod immunoglobulin G i det primære antistof. Denne metode udviser bedre følsomhed takket være amplifikationen af ​​signalet muliggjort af adskillige reaktioner af det sekundære antistof på forskellige antigene steder i hovedantistoffet. Det andet antistoflag kan mærkes med et fluorescerende farvestof, såsom FITC, Rhodamine eller Texas Red , som kaldes den indirekte immunfluorescensmetode . Det andet antistoflag kan også mærkes med et enzym, såsom peroxidase , alkalisk phosphatase eller glucoseoxidase . Denne sidstnævnte variant kaldes den indirekte immunoenzymmetode . Tilvejebringelse af et substrat for disse enzymer gør det muligt at etablere tilstedeværelsen af ​​enzymet (og derfor af antistoffet) på en kvantificerbar måde.

PEA3-antistoffet bruges til at søge efter ETV4-proteinet, der udtrykkes i stort antal i Ewings runde cellesarkom.

Ewings runde cellesarkom er en meget aggressiv kræft, der primært angriber knogler og blødt væv hos ret unge mennesker. Det er knyttet til en translokation * på niveauet af CIC - DUX4-generne, som vil producere overekspression af ETV4-proteinet.

PEA3 er et monoklonalt museantistof *. Det vil sige, at musen blev injiceret med det ønskede humane antigen (ETV4) i Ewings runde cellesarkom for at skabe et immunrespons i musen og for 'det kan producere de antistoffer, der vil blive brugt til immunhistokemi.

Læsning af det tekniske arkRehydrering

For at udføre en antigen / antistof-reaktion skal det voksede væv på objektglasset rehydratiseres. Så gør de omvendte trin, hvor vi lægger vævet i paraffin.

  1. 4 minutter i hvert bad
    • Xylen * (3 badeværelser)
    • Absolut alkohol (2 badeværelser)
    • Alkohol 90 ° C (1 bad)
    • Alkohol 70 ° C (1 bad)
  2. Nedsænk straks objektglasset i en beholder med vand (så det rehydratiserede væv ikke tørrer ud) og skylles i 3 minutter ved at løbe ledningsvand i beholderen.
  3. Nedsænk objektglasset i en beholder med destilleret vand
Forbehandling
  1. Fortynd pH9 til 1/10 ( 50  ml buffer + 500  ml destilleret vand) i et 500  ml reagensglas . Anbring objektglasset i fortyndet pH 9.
  2. Varm op i mikrobølgeovnen "programmeret på damp", objektglasset i fortyndet pH9 i 30 minutter, mens krukken ikke lukkes helt (så dampen kan slippe ud).
  3. Vent til pH9-opløsningen i krukken afkøles i 20 minutter.
  4. Skyl objektglasset i en beholder med vand i 3 min.
  5. Foretag en afgrænsning af vævene ved hjælp af en hydrofob markør.
  6. Tilsæt H2O2 (neutraliserer endogene peroxidaser (i vævet) til farvning med DAB [DAB oxidant peroxidases farvet produkt]) indtil afgrænsningsrammen er fyldt og lad den stå i 10 minutter i et fugtigt kammer (fordi antistof PEA3 virker om natten).
  7. I løbet af denne periode foretages en passende fortynding af PEA3-antistoffet.
  8. Skyl objektglasset i en beholder med vand.
  9. Anbring objektglasset i en beholder med destilleret vand.
  10. Sæt diaset i blød i en beholder, der indeholder en reaktionsbuffer (vaskebuffer, der gør det muligt at distribuere antistoffet bedre på objektglasset, fordi det har en "befugtningseffekt") i 5 minutter.
  11. Afsæt antistoffet (tillader den specifikke binding af antistoffet (musen) på ETV4-proteinet [nuklear mærkning]) i afgrænsningsboksen ved hjælp af en pipette og lad den stå natten over i køleskabet.
Åbenbaring
  1. Skyl objektglasset med reaktionsbuffer.
  2. Lad objektglasset stå i 3 minutter i en beholder indeholdende reaktionsbuffer.
  3. At sætte ged Kanin / mus antistof (denne dextran kæde, hvorpå der er koblet til ged anti kanin / mus antistof og er knyttet et stort antal peroxidase, muliggør fastgørelse af ged antistoffer til mus antistoffer [forstærker signalet giver et bedre overblik ved mikroskopisk observation]) i 30 minutter.
  4. Skyl med reaktionsbuffer.
  5. Efterlad objektglasset i en beholder med reaktionsbuffer.
  6. Forbered DAB-fortyndingen (1 ml DAB-buffer + 1 dråbe DAB) ved hjælp af en pipetter til dråber.
  7. Sæt åbenbaringen med DAB (åbenbaring af det sekundære antistof ved den enzymatiske virkning af peroxidaser + DAB [farvet produkt], derfor placeret hvor ETV4-proteinet er fikseret på det primære antistof) på afgrænsningsrammen og lad hvile 8 min i et hydreret kasse skjult for lyset.
  8. Skyl objektglasset i en beholder med vand.
  9. Anbring objektglasset i en beholder med destilleret vand.
Modfarvning
  1. Nedsænk objektglasset i 5-10 sekunder (hvis vævet er stort) eller mindre i hæmatoxylin (pletterkerner / cytoplasma / membraner, der ikke detekteres af antistoffet).
  2. Skyl med vand, indtil farvestoffet er væk.
  3. Placer objektglasset i en beholder indeholdende reaktionsbuffer (blå plet af kerner / cytoplasma / membraner) i 2 minutter.
  4. Dehydrerer (alkohol 70 ° C, alkohol 90 ° C, absolut alkohol [x2], Xylen [x3]) og monteres under dækglas

Noter og referencer

Relaterede artikler

eksterne links